The
solid-state fermentation is a potential technology for food production,
fuel, industrial chemicals products, and pharmaceuticals products (Zhao et al. 2019Zhao,
L., Cheng, L., Deng, Y., Zhaofeng, L., Hong, Y., Li, C., Ban, X. &
Gu, Z. 2019. "Study on rapid drying and spoilage prevention of potato
pulp using solid-state fermentation with Aspergillus aculeatus". Bioresource Technology, 296: 122323, ISSN: 0960-8524, DOI: https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.122323
and Chohan et al. 2020Chohan,
N.A, Aruwajoye, G.S, Sewsynker, S.Y., Gueguim-Kana, E.B. 2020.
"Valorization of potato peel wastes for bioethanol production using
simultaneous saccharification and fermentation: Process optimization and
kinetic assessment 146: 1031-1040, ISSN: 0960-1481, DOI: https://doi.org/10.1016/j.renene.2019.07.042.). Its application offers advantages in bioprocesses such as bioleaching, bio-benefiting, and bioremediation (Romero and Vargas 2017Romero, T. & Vargas, D. 2017. "Uso de microorganismos eficientes para tratar aguas contaminadas". Ingeniería Hidráulica y Ambiental, 38(3): 88-100, ISSN: 1680-0338.).
It is also used for the recycling of agro-industrial wastes and offers
an alternative that allows, through simple technologies, to modify or
alter the fermentation processes with the addition of microbial
preparations rich in lactic bacteria, and with this improve the quality
and safety of the process ( Elías and Herrera 2008Elías,
A. & Herrera, F.R. 2008. Producción de alimentos para animales a
través de procesos biotecnológicos sencillos con el empleo de
microorganismos beneficiosos activados (MEBA). Instituto de Ciencia
Animal, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba, p. 8-13. and Díaz et.al 2014Díaz,
B., Elías, A. & Valiño E. 2014. "Consorcios microbianos con
actividad ácido-láctica promisoria aislados desde inoculantes
bacterianos nativos para ensilajes". Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 17-25, ISSN: 0122-8420, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3484.).
The wastes of potato (Solanum tuberosum)
harvest are a raw matter that can be included in animal feeding.
According to the Ministry of Agriculture and Rural Development (2015),
it has great nutritional value since it is a rich source of protein,
carbohydrates, potassium, vitamin C, other vitamins and minerals to a
lesser proportion (Waglaya et al. 2019Waglaya,
A., Achourib, A., Karbounea, S., Reza-Zareifardb, M., Hocineb, L. 2019.
"Pilot plant extraction of potato proteins and their structural and
functional properties". LWT, 113: 108275, ISSN: 0023-6438, DOI: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.108275.). These characteristics favor the fermentation processes when inoculants are added (Tamasi et al. 2015Tamasi,
G., Cambi, M., Gaggelli, N., Autino, A., Cresti, M. & Cini, R.
2015. "The content of selected minerals and vitamin C for potatoes (Solanum tuberosum L.) from the high Tiber Valley area, southeast Tuscany.. Journal of Food Composition and Analysis, 41: 157-164, ISSN: 0889-1575, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfca.2014.12.028.), so the objective of this research was to study the solid -state fermentation of post -harvest wastes of S. tuberosum with a microbial preparation as inoculant.
Materials and MethodsThe
experiment of solid-state fermentation (SSF) was carry out under the
high tropic conditions (2860 m o.s.l.), in the laboratory of biochemical
and animal nutrition from Universidad Pedagógica y Tecnológica de
Colombia (UPTC), located in the north central avenue, Tunja-Paipa road,
in Tunja municipality, Boyacá department, Colombia. It has an average
temperature of 15°C and annual average rainfalls of 553 mm.
Experimental procedure. A yogurt with Lactobacillus delbrueckiis ssp. bulgaricus and Streptococcus thermophilus
(LAB) (commercial freeze-dried, Liofast Y452B, SACCO ®) was prepared.
This was added at 2 % and a concentration of 0.99x108 CFU/mL to the
microbial preparation prepared according to Borrás (2017)Borras, L.M. 2017. Obtención de un alimento por fermentación en estado sólido de residuos de poscosecha de Solanum tuberosum para la suplementación de rumiantes. PhD Thesis. Instituto de Ciencia Animal, Mayabeque, Cuba, p.100. methodology.
For
the SSF, the post-harvest wastes of the potatoes obtained commercially,
clean and chopped (approximate 3x3mm particle size) were used. A 2% of
the microbial preparation, 1 % urea, 0.5 % mineral premix and 0.5 %
sodium sulfate were added (modification made to the methodology proposed
by Elías and Herrera. 2008Elías,
A. & Herrera, F.R. 2008. Producción de alimentos para animales a
través de procesos biotecnológicos sencillos con el empleo de
microorganismos beneficiosos activados (MEBA). Instituto de Ciencia
Animal, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba, p. 8-13.).
These ingredients were mixed until obtaining a homogeneous paste. They
were distributed in plastic bags with 1 kg capacity. They were incubated
at different temperatures 20 °C, 25 °C and 30 °C, in individual
Memmert® incubators, for 48 hours. Each bag represented an experimental
unit, with three repetitions each, according to the treatments. Samples
at 0, 24 and 48 fermentation hours were taken.
The content of the
bags of each treatment was collected in its entirety and homogenized,
then 5g of sample were taken and placed in 100 mL Erlenmeyers and 45 mL
of sterile distilled water were added with three repetitions. The
preparation was shaken for 30 minutes on an Adams® electric shaker and
subsequently the filtrate was obtained for pH measurement in an Okaton®
automatic potentiometer for microbiological analysis.
The total of
solids left in the bags were dried and ground in a UDY®, hammer mill
with a 1 mm sieve, for chemical quantification analysis using the
following analytical techniques: dry matter (DM), crude protein (CP), by
AOAC (2005)AOAC
(Association of Official Analytical Chemists). 2005. Official Methods
of Analysis 18th Ed. Ed. Association of Officiating Analytical Chemists.
Washington D.C., U.S.A, ISBN: 978-093-5584-752.; true protein (TP) according to Berstein cited by Meir (1986)Meir, H. 1986. Laborproktibuire. Tierernährung Und, futtermittel für Tiere Produzenten. 45: 3. Verlag, Berlin, Germany. and crude fiber (CF) according to Van Soest et al. (1991)Van
Soest, P.J., Robertson, J.B. & Lewis, B.A. 1991. "Methods for
Dietary Fiber, Neutral Detergent Fiber, and Nonstarch Polysaccharides in
Relation to Animal Nutrition". Journal of Dairy Science, 74(10): 3583-3597, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2..
The ammonia (NH3) was determined by the Berthelot technique (Martínez et al. 2003Martínez,
F., Balciunas, E., Salgado, J., González, J., Converti, A. &
Oliveira, R. 2003. "Lactic acid properties, applications and production:
A review". Trends in Food Science & Technology, 30(1): 70-83, ISSN: 0924-2244, DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2012.11.007.). The quantification of short chain acids (SCFA) was carried out by the method reported by Dinkci et al. (2007)Dinkci,
N., Akalın, A., Gonc, S. & Una, L. G. 2007. "Isocratic
Reverse-Phase HPLC for Determination of Organic Acids in Kargı Tulum
Cheese". Chromatographia, 66: 45-49, ISSN: 1612-1112, DOI: https://doi.org/10.1365/s10337-007-0234-6..
By means of high efficiency liquid chromatography HPLC, the Gemini 5u
C18 110A column (PHENOMENEX) was used, with a UV vis light detector at
214nm at room temperature (15 °C), with a mobile phase of (NH4)2PO4 0.5 %
W/V; acetonitrile 0.4% V/V, pH was fitted to 2.24 with H3PO4 (filtered
with a 0.22 µm pore membrane, degassed by sonication and bubbling with
hydrogen) and a flow of 0.5 mL / min was applied, quantified with
Claritychrom software version 5.0.5.98.
The microbiological
composition was determined at 0, 24 and 48h of fermentation, in a
certified laboratory for the microbiological control, located in Boyacá,
Colombia. For aerobic mesophiles (forming colony units per milliliter,
UFC/mL) (AOAC 966.23.C: 2001), total coliforms, Most probably number
(MPN) (ICMSF NMP: 2000), total and fecal coliforms (NMP), (ICMSF NMP:
2000), spores of Clostridium sulfite reductor (UFC/mL), (ISO 15213: 2003), fungi and yeasts (UFC/mL)(ISO 7954: 987), Salmonella (AS 5013.10: 2009) and lactic acid bacteria (LAB) (NTC 5034: 2002).
Experimental
design and statistical analysis. Analysis of variance was carried out
according to a completely randomized design with (3x3) factorial
arrangement and three repetitions. The factors were temperature (20, 25
and 30 ºC) and fermentation time (0, 24 and 48 hours) for the following
indicators: pH, NH3, SCFA, CF, CP, TP and microbial groups. Duncan's
test was applied for P <0.05 when necessary. The statistical package
INFOSTAT, version 2012 (Di Rienzo et al. 2012Di
Rienzo, J.A., Casanoves, F., Balzarini, M.G., González, L., Tablada, M.
& Robledo, C.W. 2012. InfoStat version 2012 [Windows]. Grupo
InfoStat, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. Available: <http://www.infostat.com.ar>.)
was used for the analysis. In the case of the microorganism counts, the
data did not follow the normal distribution, so they were transformed
according to logX.
Results and Discussion
Table 1 shows the interaction of the results achieved in the solid fermentation with the post-harvest wastes of S. tuberosum
and the microbial preparation at different temperatures and
fermentation times, which was designed to obtain higher protein biomass
and metabolite production.
Table 1.
Performance of pH, NH3 and SCFA, in relation to temperature during 48 hours of fermentation of post-harvest wastes of Solanum tuberosum with the microbial preparation
| Fermentation time (h) | SE±Sig |
---|
Indicator | Temperature 0C | 0 | 24 | 48 |
---|
pH | 20 | 5.70a | 5.10b | 4.51c | 0.040 P<0.0001 |
25 | 4.62c | 4.44c |
30 | 4.31c | 4.42c |
Lactic acid mmol/L | 20 | 16.86a | 165.64g | 160.57f | 0.003 P<0.0001 |
25 | 54.40e | 41.89c |
30 | 50.20d | 23.71b |
Propionic acid mmol/L | 20 | 14.33d | 9.34c | 20.65e | 0.003 P<0.0001 |
25 | 0.002ª | 0.002b |
30 | 0.002ª | 0.002b |
NH3 meq/L | 20 | 1,79a | 4.19c | 5.47f | 0.003 P<0.0001 |
25 | 4.57e | 4.37d |
30 | 3.88b | 6.02g |
a, b, c, d,d, e, f, gMeans with different letters show differences to P<0.05 according Duncan (1955)Duncan, D.B. 1955. "Multiple Range and Multiple F Tests". Biometrics, 11(1): 1-42, ISSN: 0006-341X, DOI: https://doi.org/10.2307/3001478.
The performance of the SCFAs studied shows the absence of
acetic, butyric, isovaleric and isobutyric acid and only propionic acid
values were recorded at 24 and 48 h (9.34 mmol/L and 20.65 mmol/L,
respectively) at a 20 °C temperature. These values are not significant
to influence on the fermentation deterioration, while at this same
temperature high productions of lactic acid during the process were
observed. However, a temperature effect was found with notable
differences at 25 and 30ºC of fermentation of 118.68 and 136.86 mmol/L
respectively at 48h. This could be influenced by the concentration of
lactic bacteria, considering that the amount (0.99x108 CFU/mL) as a
starter or accelerator culture is adequate to maintain low pH values.
This result is considered important in the elaboration of strategy for
biological accelerators for the fermentation processes of the
post-harvest wastes of Solanum tuberosum and to eliminate undesirable pathogens.
Differences
in the performance of pH (P <0.05) with respect to time were also
observed and low pH was obtained in the three temperatures evaluated at
48h, where the low ammonia production favors the pH indicator. According
to Okubo et al. (2018)Okubo,
M., Sato, K., Matsuda, S., Masuko, T. & Souma, K. 2018. "Data on
chemical compositions and fermentation quality of silages made from
low-market value vegetables supplemented with potato protein concentrate
a byproduct of starch production". Data in Brief, 21: 11829-1832, ISSN: 2352-3409, DOI: https://doi.org/10.1016/j.dib.2018.11.043.,
the main objective of applying microbial preparations in post-harvest
wastes, in addition to accelerating the microbial synthesis processes,
is to reduce the pH faster to preserve carbohydrates and proteins (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.),
and inhibit the growth of microorganisms that could deteriorate it.
Therefore, the concentration used for fermentation and in the chemical
and microbiological composition of the microbial preparation was
effective, according to Borrás (2017)Borras, L.M. 2017. Obtención de un alimento por fermentación en estado sólido de residuos de poscosecha de Solanum tuberosum para la suplementación de rumiantes. PhD Thesis. Instituto de Ciencia Animal, Mayabeque, Cuba, p.100. methodology.
When
there is a low pH, such as that obtained in the treatments at 24 and 48
h of fermentation, the NH3 produced is retained in the substrate by the
high humidity of the potato post-harvest wastes, as observed for the
three studied temperatures. This performance can be attributed to the
use of available sugars by some microorganisms that prevail in the
product and to non-protein nitrogen in the mixture of the components to
be fermented, for the formation of their cellular protoplasm.
The low NH3 values coincide with that reported by Ramos et al. (2007) with inoculations of 5 % of Vitafert, in Sacchasorgo and Sacchapulido, at a temperature of 25°C. Nout (2014)Nout,
M.J.R. 2014. Food Technologies: Fermentation. In: Encyclopedia of Food
Safety, Volume 3: Foods, Materials, Technologies and Risks. Holt, S.
& Phadnis, R. (eds). Ed. Academic Press, pp.168-177, ISBN:
9780123786128, DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-378612-8.00270-5. stated that the inoculation of S. tuberosum
wastes in the silage showed a reduction in the concentration of
N-ammonia in comparison with the group without the addition of the
inoculant. However, Díaz et al. (2014)Díaz,
B., Elías, A. & Valiño E. 2014. "Consorcios microbianos con
actividad ácido-láctica promisoria aislados desde inoculantes
bacterianos nativos para ensilajes". Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 17-25, ISSN: 0122-8420, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3484.
found a different tendency where the pH initially increases at hour 8
of the process, and then slowly decreases towards the end of the
fermentation (96 h) under conditions similar to those described for this
preparation, but with other agro-industrial wastes that could influence
on the result.
Table 2 shows the results of the performance of the chemical indicators of the post-harvest wastes of S. tuberosum with the microbial preparation (P <0.05) at different incubation temperatures.
Table 2.
Performance of the chemical indicators of the post-harvest wastes of S. tuberosum with the microbial preparation
Indicator (%) | Temperature (o C) | Fermentation time (h) | SE±Sign |
---|
0 | 24 | 48 |
---|
DM | 20 | 15.83a | 38.13c | 19.30b | 0.30 P<0.0001 |
25 | 39.48c | 19.18b |
30 | 38.59c | 17.98b |
CP | 20 | 15.55ab | 21.05c | 16.68b | 0.420 P<0.0001 |
25 | 20.83c | 14.85a |
30 | 20.28c | 14.84a |
TP | 20 | 8.84ab | 10.85c | 10.31bc | 0.480 P=0.0125 |
25 | 11.54c | 10.31bc |
30 | 7.83a | 8.24a |
CF | 20 | 5.08a | 8.43ab | 9.71b | 1.170 P=0.0038 |
25 | 8.43ab | 9.71b |
30 | 9.04b | 7.24ab |
Ash | 20 | 6.39a | 7.89b | 16.17e | 0.42 P<0.0001 |
25 | 8.40b | 11.01c |
30 | 13.94d | 6.63a |
The results show interaction between the studied factors (P
<0.0001). The DM at 24 h increased to 22.3; 23.65 and 22.76
percentage units with respect to zero hours. This condition is not
maintained at 48 h, due to the metabolic processes of the
microorganisms, both from the microbial preparation and from the
post-harvest wastes of potato, which probably caused a DM reduction in
the product due to the use of sugars (sucrose, glucose, and fructose)
and starch in their metabolic processes which generate water, CO2 and
SCFA. This DM reduction is insufficient for subsequent silage processes,
therefore additives such as drying material (calcium carbonate) that do
not have an inhibitory effect on microbial synthesis should be
considered. Prada (2012)Prada,
R. 2012. "Alternativa de aprovechamiento eficiente de residuos
biodegradables: el caso del almidón residual derivado de la
industrialización de la papa Bogotá, 180-192". Revista EAN, (72): 182-192, ISSN: 0120-8160 . reported humidity values for raw potato storage between 75-76 % attributed to microbial synthesis processes.
Regarding the percentage of ash in the fermentation of post-harvest wastes of S. tuberosum with the microbial preparation, it is considered that they have higher values than the raw potato (Cárdenas et al. 2008Cárdenas,
J., Aranda, E., Hernández, D., Lagunes, L., Ramos, J. & Salgado, S.
2008. "Obtainment of a feed fermented in solid state from return
bagasse pith, rice polishing and inocula. Its use in animal feeding". Cuban Journal of Agricultural Science, 42(2):173-176, ISSN: 2079-3480.).
The values found in this study depend on the nature of the soil where
the tuber was grown and on the 0.5 % mineral premixture added to the
substrate for fermentation (Miranda et al. 2018Miranda,
J.E., Marin, A.C., Sánchez, D.M., García, Y.H. 2018. "Obtaining,
characterization and evaluation of two candidate preparations for
probiotics developed with agroindustrial waste". Revista MVZ Córdoba, 23(1): 6487-6499, ISSN: 0122-0268, DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1243.).
The
mineral composition is important for the microbiota metabolism and
achieving protein biomass, which is why there is an increase in CP of
5.5; 5.28 and 4.73 percentage units at 20, 25 and 30°C, in 24 h of
fermentation, respectively. However, it markedly decreased after 48
fermentation hours in the same proportion and became below the control
for the highest temperatures. Fonseca and Borrás (2014)Fonseca,
D. & Borrás, L. 2014. "Evaluación del efecto de la papa fresca
incluida en un alimento para vacas Holstein, sobre la producción y
calidad de leche. Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 55-65, ISSN: 2539-0899, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3488. determined a value of 7.73 % of CP in the tuber; value exceeded in this study when fermenting the post-harvest wastes of S. tuberosum
and the product fermented in 24 h at 20°C reaches up to 21 %, this
condition could be attributed to the microbial preparation with lactic
acid activity as a biological accelerator. Okubo et al. (2018)Okubo,
M., Sato, K., Matsuda, S., Masuko, T. & Souma, K. 2018. "Data on
chemical compositions and fermentation quality of silages made from
low-market value vegetables supplemented with potato protein concentrate
a byproduct of starch production". Data in Brief, 21: 11829-1832, ISSN: 2352-3409, DOI: https://doi.org/10.1016/j.dib.2018.11.043.
added a raw potato protein concentrate and supplemented the protein of
the silage content without inoculum and obtained favorable results.
The
true protein indicator increased 2.01 and 2.7 percentage units at
temperatures of 20 and 25°C, in 24 h of fermentation. The highest ratio
of (TP/CP*100) for these temperatures was 61.2 and 69.42, respectively,
at 48 h. fermentation. However, at higher temperatures, microbial
synthesis is depressed in 24 h and remains unchanged at 48 h according
to the control, so that the increase in 50C for these fermentation
conditions limits the microbial growth and therefore could affect
protein synthesis.
In this study there was an increase in fiber
with respect to the fermentation time, probably due to the increase in
the cell walls content, in relation to the starch of potato wastes and
the fermentation of sugars by the microorganisms that developed in the
system, similar results were found by Aranda et al. (2012)Aranda,
E., Georgana, L., Ramos, J. & Salgado, S. 2012. "Elaboration of a
feed based on the solid state fermentation of sugarcane and with
different levels of zeolites". Cuban Journal of Agricultural Science, 46(2): 159-163, ISSN: 2079-3480..
However, the values are still very low, which implies the need to
combine this food with other foods high in fiber, in order to produce a
better use specifically for ruminants.
Table 3 shows
the results of the microbiological analysis carried out on the
fermentation of the potato wastes inoculated with the microbial
preparation. There is effect of temperature with respect to the
fermentation time on the microbial concentrations of mesophilic
bacteria, yeasts and lactic acid bacteria (P <0.0001). The presence
of fecal coliforms, Salmonella, or Clostridium spores was not detected, a result that supports its quality to use it as a sanitary safe product for animal nutrition.
Table 3.
Effect of temperature on the
composition of aerobic mesophilic bacteria, yeasts, lactic acid bacteria
during the fermentation of post-harvest wastes of S. tuberosum with the microbial preparation
Microorganism (log 10 UFC/mL) UFC/mL | Fermentation Time(h) | Temperature (°C) | SE±Sign |
---|
20 | 25 | 30 |
---|
Aerobic mesophilic bacteria | 0 | 5.34ª (2.1x105) | 5.33ª (2.1x105) | 5.33ª (2.1x105) | 0.02 P<0.0001 |
24 | 8.10e (1.2x108) | 7.74d (5.5x107 ) | 7.80d (6.3x107) |
48 | 7.03b (1.0x107) | 7.18c (1.5x107) | 8.19f (1.4x108) |
Yeats | 0 | 4.40c (2.5x104) | 5.33d (2.5x104) | 5.33d (2.5x104) | 0.01 P<0.0001 |
24 | 4.37c (2.1x104) | 4.11b (1.3x104) | 4.04a (1.1x104) |
48 | 5.75f (5.6x105) | 5.74f (5.3x105) | 5.61e (4.1x105) |
Lactic acid bacteria | 0 | 5.88a (7.5x105) | 5.88a (7.5x105) | 6.90b (8.0x106) | 0.02 P<0.0001 |
24 | 7.77f (6.1x107) | 7.77f (6.1x107) | 7.70e (5.0x107) |
48 | 6.98c (9.5x106) | 7.09d (1.0x107) | 8.03g (1.0x108) |
a, b, c, d, e, f, gMeans with different letters differ to P<0.05 (Duncan 1955Duncan, D.B. 1955. "Multiple Range and Multiple F Tests". Biometrics, 11(1): 1-42, ISSN: 0006-341X, DOI: https://doi.org/10.2307/3001478.)
*Data were transformed according to log10 (X) because they do not follow a normal distribution
( ) means of the colony forming units per milliliters (cfu•mL-1)
There is an increase in the concentration of aerobic
mesophilic bacteria, which increased with fermentation temperatures.
This result is related to the decrease in fermentation pH and the
organic acids produced at that time as shown in table 1 and probably to bacteriocins produced by lactic acid bacteria that act as antimicrobial substances (Parra 2010Parra R.A. 2010. "Review. Bacterias ácido lácticas: Papel funcional en los alimentos". Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial, 8(1): 93-105, ISSN: 1909-9959. and Nkosi et al. 2019Nkosi,
B.D., Meeske, R., Muya, M.C., Langa, T., Thomas, R.S., Malebana,
I.M.M., Motiang, M.D., Van Niekerk, J.A. 2019. "Microbial additives
affect silage quality and ruminal dry matter degradability of avocado (Persia Americana) pulp silage". South African Journal of Animal Science, 49(6): 997-1007, ISSN: 2221-4062, DOI: https://doi.org/10.4314/sajas.v49i6.3.)
Yeasts
as part of the fermentation ecosystem markedly increased with the
fermentation time. There are differences in its growth with respect to
the control and with respect to the studied temperatures (P <0.0001)
due to the wide range of growth of this genus and the microbial
interactions between the selected strains, which could coexist in
stimulation relations and neutralism with LAB, similar studies that are
carried out on other substrates with higher acidity (Pardo and Ferrer 2019Pardo,
I. & Ferrer, S. 2019. Chapter 7 - Yeast-Bacteria Coinoculation. In:
Red Wine Technology. Morata, A, (ed.). 1st Ed. Ed. Academic Press.
Madrid, Spain, p. 99-114, ISBN: 978-0-12-814399-5, DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814399-5.00007-4.).
While other yeast research suggests that it may be possible to apply a
microbial strain of direct-feeding to silage, make it survive silage,
and multiply during feeding (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.).
The
concentration of LAB gradually increased until 48 h with the three
temperatures under study. These increases in microbial biomass are
favorable for the organic acids production which maintain low pH values
and eliminate pathogenic microorganisms (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.), indicating that the humidity of the ecosystem did not influence on the deterioration of the final fermentation.
The lactic acid bacteria used in this study are heterofermentative with medium and rapid acidification, L. delbrueckii ssp bulgaricus and S. thermophilus, were chosen as starter cultures because they were considered sanitary safe and provide aerobic stability (Munk et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.).
They are widely distributed in nature and have been isolated from
various environments, for their growth they require sugars such as
glucose and lactose, in addition to amino acids, vitamins and other
factors (Azadnia et al. 2011Azadnia, P., Zamani, M., Shah, G., Khalegh, M., Karimi, M. & Taarof, N. 2011. "Isolation and identification of thermophilic Lactobacillic from tradicional yoghurts of tribes of Kaserum". Journal of Animal and Veterinary Advances,10(6): 774-776, ISSN: 1680-5593., Mesa 2016Mesa,
J.R. 2016. Efecto de un biopreparado de producción local a base de
microorganismos eficientes sobre diferentes cultivos en la provincia de
Cienfuegos. Memorias IV Convención Internacional Agrodesarrollo 2016,
Varadero, Matanzas, Cuba. and Miranda et al. 2018Miranda,
J.E., Marin, A.C., Sánchez, D.M., García, Y.H. 2018. "Obtaining,
characterization and evaluation of two candidate preparations for
probiotics developed with agroindustrial waste". Revista MVZ Córdoba, 23(1): 6487-6499, ISSN: 0122-0268, DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1243.), nutrients that are in the fermentation mixture.
The
variables or indicators analyzed in this study (microbial
concentration, protein, ammonia, SCFA, pH) as a result of the
fermentation of potato post-harvest wastes determine a product with
characteristics to be considered in the ruminant's feeding. These
indicators are part of the quality control system with biological
inoculations, however, the results in the fiber and DM show that other
formulations must be studied for their effective process of obtaining
the final product. The results show that the microbial preparation with
lactic acid activity used acts as a biological accelerator of the solid
fermentation process of potato post-harvest wastes under the established
experimental conditions.
It is concluded that the solid -state fermentation of post-harvest wastes of Solanum tuberosum
and a microbial preparation with lactic activity favors this process
and other formulations with drying and fibrous material should be
studied for an effective silage process of the final product.
La
fermentación en estado sólido es una tecnología potencial para la
producción de alimentos, combustibles, productos químicos industriales y
productos farmacéuticos (Zhao et al. 2019Zhao,
L., Cheng, L., Deng, Y., Zhaofeng, L., Hong, Y., Li, C., Ban, X. &
Gu, Z. 2019. "Study on rapid drying and spoilage prevention of potato
pulp using solid-state fermentation with Aspergillus aculeatus". Bioresource Technology, 296: 122323, ISSN: 0960-8524, DOI: https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.122323
y Chohan et al. 2020Chohan,
N.A, Aruwajoye, G.S, Sewsynker, S.Y., Gueguim-Kana, E.B. 2020.
"Valorization of potato peel wastes for bioethanol production using
simultaneous saccharification and fermentation: Process optimization and
kinetic assessment 146: 1031-1040, ISSN: 0960-1481, DOI: https://doi.org/10.1016/j.renene.2019.07.042.). Su aplicación ofrece ventajas en bioprocesos como biolixiviación, biobeneficiación y bioremediación (Romero y Vargas 2017Romero, T. & Vargas, D. 2017. "Uso de microorganismos eficientes para tratar aguas contaminadas". Ingeniería Hidráulica y Ambiental, 38(3): 88-100, ISSN: 1680-0338.).
Se emplea además, para el reciclaje de los residuos agroindustriales y
ofrece una alternativa que permite, a través de tecnologías sencillas,
modificar o alterar los procesos fermentativos con la adición de
preparados microbianos ricos en bacterias lácticas, y con esto mejorar
la calidad e inocuidad del proceso (Elías y Herrera 2008Elías,
A. & Herrera, F.R. 2008. Producción de alimentos para animales a
través de procesos biotecnológicos sencillos con el empleo de
microorganismos beneficiosos activados (MEBA). Instituto de Ciencia
Animal, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba, p. 8-13. y Díaz et. 2014Díaz,
B., Elías, A. & Valiño E. 2014. "Consorcios microbianos con
actividad ácido-láctica promisoria aislados desde inoculantes
bacterianos nativos para ensilajes". Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 17-25, ISSN: 0122-8420, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3484.).
Los residuos de la cosecha de la papa (Solanum tuberosum)
son una materia prima que se puede incluir en la alimentación animal.
Según el Ministerio de la Agricultura y Desarrollo Rural (2015), tiene
gran valor alimenticio pues es una fuente rica en proteína,
carbohidratos, potasio, vitamina C, otras vitaminas y minerales en menor
proporción (Waglaya et al. 2019Waglaya,
A., Achourib, A., Karbounea, S., Reza-Zareifardb, M., Hocineb, L. 2019.
"Pilot plant extraction of potato proteins and their structural and
functional properties". LWT, 113: 108275, ISSN: 0023-6438, DOI: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.108275.). Estas características favorecen los procesos fermentativos cuando se le adicionan inoculantes (Tamasi et al. 2015Tamasi,
G., Cambi, M., Gaggelli, N., Autino, A., Cresti, M. & Cini, R.
2015. "The content of selected minerals and vitamin C for potatoes (Solanum tuberosum L.) from the high Tiber Valley area, southeast Tuscany.. Journal of Food Composition and Analysis, 41: 157-164, ISSN: 0889-1575, DOI: https://doi.org/10.1016/j.jfca.2014.12.028.), por lo que el objetivo de la presente investigación fue estudiar la fermentación en estado sólido de residuos poscosecha de S. tuberosum con un preparado microbiano como inoculante.
Materiales y MétodosEl
experimento de fermentación en estado sólido (FES) se realizó en
condiciones de trópico alto (2860 msnm), en el laboratorio de bioquímica
y nutrición animal de la Universidad Pedagógica y Tecnológica de
Colombia (UPTC), ubicado en la avenida central del norte, vía
Tunja-Paipa, en el municipio de Tunja, departamento de Boyacá, Colombia.
Cuenta con una temperatura promedio de 15°C y precipitación media anual
de 553 mm.
Procedimiento experimental. Se elaboró un yogurt con Lactobacillus delbrueckiis ssp. bulgaricus y Streptococcus thermophilus
(BAL) (comercial liofilizado, Liofast Y452B, SACCO ®). Este se adicionó
en 2% y concentración de 0,99x108 UFC/mL al preparado microbiano
elaborado según la metodología de Borrás et al. (2017)Borras, L.M. 2017. Obtención de un alimento por fermentación en estado sólido de residuos de poscosecha de Solanum tuberosum para la suplementación de rumiantes. PhD Thesis. Instituto de Ciencia Animal, Mayabeque, Cuba, p.100..
Para
la FES se emplearon los residuos poscosecha de las papas obtenidas
comercialmente, limpios y picados (tamaño aproximado de partícula
3x3mm). Se añadió 2% del preparado microbiano, 1% de urea, 0,5%
premezcla mineral y 0,5% de sulfato de sodio (modificación realizada a
la metodología propuesta por Elías et al. 2008Elías,
A. & Herrera, F.R. 2008. Producción de alimentos para animales a
través de procesos biotecnológicos sencillos con el empleo de
microorganismos beneficiosos activados (MEBA). Instituto de Ciencia
Animal, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba, p. 8-13.).
Estos ingredientes se mezclaron hasta obtener una pasta homogénea. Se
distribuyeron en bolsas plásticas de capacidad 1 kg. Se procedió a
incubarlas a diferentes temperaturas 20°C, 25°C y 30°C, en incubadoras
individuales marca Memmert®, durante 48 horas. Cada bolsa representó una
unidad experimental, con tres repeticiones cada una, según los
tratamientos. Se tomaron muestras a las 0, 24 y 48 horas de
fermentación.
El contenido de las bolsas de cada tratamiento fue
recolectado en su totalidad y homogenizado, luego se tomaron 5g de
muestra que se colocaron en Erlenmeyers de 100 mL y se les adicionó 45
mL de agua destilada estéril con tres repeticiones. La preparación se
agitó durante 30 minutos en un agitador eléctrico marca Adams® y
posteriormente se obtuvo el filtrado para medición del pH en un
potenciómetro automático marca Okaton® y para el análisis
microbiológico.
El total de los sólidos que quedó en las bolsas se
secó y se molieron en un molino de martillo marca UDY®, con criba de 1
mm, para análisis de cuantificación química mediante las siguientes
técnicas analíticas: materia seca (MS), proteína bruta (PB), por la AOAC (2005)AOAC
(Association of Official Analytical Chemists). 2005. Official Methods
of Analysis 18th Ed. Ed. Association of Officiating Analytical Chemists.
Washington D.C., U.S.A, ISBN: 978-093-5584-752.; proteína verdadera (PV) según Berstein citado por Meir (1986)Meir, H. 1986. Laborproktibuire. Tierernährung Und, futtermittel für Tiere Produzenten. 45: 3. Verlag, Berlin, Germany. y la fibra bruta (FB) de acuerdo con Van Soest et al. (1991)Van
Soest, P.J., Robertson, J.B. & Lewis, B.A. 1991. "Methods for
Dietary Fiber, Neutral Detergent Fiber, and Nonstarch Polysaccharides in
Relation to Animal Nutrition". Journal of Dairy Science, 74(10): 3583-3597, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(91)78551-2..
El amoniaco (NH3) se determinó por la técnica de Berthelot (Martínez et al. 2003Martínez,
F., Balciunas, E., Salgado, J., González, J., Converti, A. &
Oliveira, R. 2003. "Lactic acid properties, applications and production:
A review". Trends in Food Science & Technology, 30(1): 70-83, ISSN: 0924-2244, DOI: https://doi.org/10.1016/j.tifs.2012.11.007.). La cuantificación de ácidos de cadena corta (AGCC) se realizó por el método reportado por Dinkci et al. (2007)Dinkci,
N., Akalın, A., Gonc, S. & Una, L. G. 2007. "Isocratic
Reverse-Phase HPLC for Determination of Organic Acids in Kargı Tulum
Cheese". Chromatographia, 66: 45-49, ISSN: 1612-1112, DOI: https://doi.org/10.1365/s10337-007-0234-6..
Por medio de cromatografía líquida de alta eficiencia HPLC se utilizó
la columna Gemini 5u C18 110A (PHENOMENEX), con detector de luz UV vis a
214nm a temperatura ambiente (15°C), con fase móvil de (NH4)2PO4 0,5%
P/V; acetonitrilo 0.4%V/V, se ajustó pH a 2,24 con H3PO4 (filtrada con
membrana de 0,22 µm de poro, desgasificada por sonicación y burbujeo con
hidrógeno) y se aplicó un flujo de 0,5 mL/min, se cuantificó con el
software Claritychrom versión 5.0.5.98.
Se determinó la
composición microbiológica a 0, 24 y 48 h de fermentación en un
laboratorio certificado de Control Microbiológico ubicado en Boyacá,
Colombia. Para aerobios mesófilos (unidades formadoras de colonia por
mililitro, UFC/mL) (AOAC 966.23.C: 2001), coliformes totales Número más
probable (NMP) (ICMSF NMP: 2000), coliformes totales y fecales (NMP),
(ICMSF NMP: 2000), esporas de Clostridium Sulfito reductor (UFC/mL), (ISO 15213:2003), hongos y levaduras (UFC/mL) (ISO 7954:1987), Salmonella (AS 5013.10:2009) y bacterias ácido lácticas (NTC 5034: 2002).
Diseño
experimental y análisis estadístico. Se realizó análisis de varianza,
según diseño completamente aleatorizado con arreglo factorial (3x3) y
tres repeticiones. Los factores fueron la temperatura (20, 25 y 30 ºC) y
el tiempo de fermentación (0, 24 y 48 horas) para los siguientes
indicadores: pH, NH3, AGCC, FB, PB, PV y grupos microbianos. Se aplicó
dócima de Duncan para P<0,05 en los casos necesarios. El paquete
estadístico utilizado para los análisis fue INFOSTAT, versión 2012 (Di Rienzo et al. 2012Di
Rienzo, J.A., Casanoves, F., Balzarini, M.G., González, L., Tablada, M.
& Robledo, C.W. 2012. InfoStat version 2012 [Windows]. Grupo
InfoStat, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. Available: <http://www.infostat.com.ar>.).
En el caso de los conteos de microorganismos, los datos no siguieron la
distribución normal por lo que se transformaron según logX.
Resultados y DiscusiónLa tabla 1 muestra la interacción de los resultados alcanzados en la fermentación sólida con los residuos poscosecha de S. tuberosum
y el preparado microbiano a diferentes temperaturas y tiempos de
fermentación, la que fue diseñada para obtener mayor biomasa proteica y
producción de metabolitos.
El comportamiento de los AGCC
estudiados muestra ausencia del ácido acético, butírico, isovalérico,
isobutírico y solo se registraron valores del ácido propiónico a las 24 y
48 h de (9,34 mmol/L y 20,65 mmol/L, respectivamente) a una temperatura
de 20ºC. Estos valores son despreciables para influir en el deterioro
de la fermentación, mientras que a esta misma temperatura se observaron
altas producciones del ácido láctico durante el proceso. Sin embargo, se
encontró un efecto de la temperatura con diferencias notables a los 25 y
30ºC de fermentación de 118.68 y 136.86 mmol/L respectivamente a las
48h. Lo que pudiera estar influido por la concentración de bacterias
lácticas, considerando que la carga (0,99x108 UFC/mL) como cultivo
iniciador o acelerante es adecuada para mantener valores de pH bajos.
Este resultado se considera importante en la estrategia de elaboración
de acelarantes biológicos para los procesos de fermentación de los
residuos poscosecha de Solanum tuberosum y para eliminar patógenos indeseables.
Se
observó, también, diferencias en el comportamiento del pH (P<0,05)
con respecto al tiempo y se obtuvieron pH bajos en las tres temperaturas
evaluadas a las 48h, donde la baja producción de amoniaco favorece el
indicador de pH. Según Okubo et al. (2018)Okubo,
M., Sato, K., Matsuda, S., Masuko, T. & Souma, K. 2018. "Data on
chemical compositions and fermentation quality of silages made from
low-market value vegetables supplemented with potato protein concentrate
a byproduct of starch production". Data in Brief, 21: 11829-1832, ISSN: 2352-3409, DOI: https://doi.org/10.1016/j.dib.2018.11.043.,
el principal objetivo de aplicar preparados microbianos en desechos de
poscosecha, además de acelerar los procesos de síntesis microbiana es
reducir el pH más rápido para preservar los carbohidratos y proteínas (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.),
e inhibir el crecimiento de microorganismos que pudieran deteriorarlo.
Por lo que, fue efectivo la concentración utilizada para la fermentación
y en la composición química y microbiológica del preparado microbiano,
según metodología de Borrás (2017)Borras, L.M. 2017. Obtención de un alimento por fermentación en estado sólido de residuos de poscosecha de Solanum tuberosum para la suplementación de rumiantes. PhD Thesis. Instituto de Ciencia Animal, Mayabeque, Cuba, p.100..
Cuando
se tiene un pH bajo, como el obtenido en los tratamientos a las 24 y 48
h de fermentación, el NH3 producido es retenido en el sustrato por la
alta humedad de los residuos poscosecha de la papa como se observa para
las tres temperaturas estudiadas. Este comportamiento se puede atribuir a
la utilización de los azúcares disponibles, por parte de los algunos
microorganismos que prevalecen en el producto y al nitrógeno no proteico
en la mezcla de los componentes a fermentar, para la formación de su
protoplasma celular.
Los bajos valores de NH3, coinciden con lo reportado por Ramos et al. (2007) con inoculaciones del 5% de Vitafert, en Sacchasorgo y Sacchapulido, a temperatura de 25°C. Nout (2014)Nout,
M.J.R. 2014. Food Technologies: Fermentation. In: Encyclopedia of Food
Safety, Volume 3: Foods, Materials, Technologies and Risks. Holt, S.
& Phadnis, R. (eds). Ed. Academic Press, pp.168-177, ISBN:
9780123786128, DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-378612-8.00270-5. manifestó que la inoculación en desechos de S. tuberosum
en el ensilaje, mostraron reducción en la concentración de N-amoniacal
en comparación con el grupo sin la adición de inoculante. Sin embargo, Díaz et al. (2014)Díaz,
B., Elías, A. & Valiño E. 2014. "Consorcios microbianos con
actividad ácido-láctica promisoria aislados desde inoculantes
bacterianos nativos para ensilajes". Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 17-25, ISSN: 0122-8420, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3484.
encontraron una tendencia diferente donde el pH aumenta inicialmente a
la hora 8 del proceso, para luego descender lentamente hacia el final de
la fermentación (96 h) en condiciones similares a las descritas para
este preparado, pero con otros desechos agroindustriales que pudieron
influir en el resultado.
Tabla 1.
Comportamiento del pH, NH3 y AGCC, en relación a la temperatura y durante 48 horas fermentación de los residuos poscosecha de Solanum tuberosum con el preparado microbiano.
| Tiempo de Fermentación (h) | EE ± Sig |
---|
Indicador | Temperatura 0C | 0 | 24 | 48 |
---|
pH | 20 | 5,70a | 5,10b | 4,51c | 0,040 P<0,0001 |
25 | 4,62c | 4,44c |
30 | 4,31c | 4,42c |
Ácido Láctico mmol/L | 20 | 16,86a | 165,64g | 160,57f | 0,003 P<0,0001 |
25 | 54,40e | 41,89c |
30 | 50,20d | 23,71b |
Ácido Propiónico mmol/L | 20 | 14,33d | 9,34c | 20,65e | 0,003 P<0,0001 |
25 | 0,002ª | 0,002b |
30 | 0,002ª | 0,002b |
NH3 meq/L | 20 | 1,79a | 4,19c | 5,47f | 0,003 P<0,0001 |
25 | 4,57e | 4,37d |
30 | 3,88b | 6,02g |
a, b, c, d…gMedias con letras distintas indican diferencias a P<0,05 según Duncan (1955)Duncan, D.B. 1955. "Multiple Range and Multiple F Tests". Biometrics, 11(1): 1-42, ISSN: 0006-341X, DOI: https://doi.org/10.2307/3001478.
En la tabla 2 se muestran los resultados del comportamiento de los indicadores químicos de los residuales poscosecha de S. tuberosum con el preparado microbiano (P<0,05) a diferentes temperaturas de incubación.
Los
resultados muestran interacción entre los factores estudiados
(P<0,0001). La MS a las 24 h incrementó a 22,3; 23,65 y 22,76
unidades porcentuales con respecto a las cero horas. Esta condición no
se mantiene a las 48 h, debido a los procesos metabólicos de los
microorganismos tanto del preparado microbiano como de los residuales
poscosecha de la papa, lo que provocó probablemente una reducción de MS
en el producto por la utilización de azúcares (sacarosa, glucosa,
fructosa) y almidón en sus procesos metabólicos lo que genera agua, CO2 y
AGCC. Esta reducción de la MS es insuficiente para los procesos
posteriores de ensilado, por lo que debe valorarse aditivos como
material secantes (carbonato de calcio) que no tengan efecto inhibidor
en la síntesis microbiana. Prada (2012)Prada,
R. 2012. "Alternativa de aprovechamiento eficiente de residuos
biodegradables: el caso del almidón residual derivado de la
industrialización de la papa Bogotá, 180-192". Revista EAN, (72): 182-192, ISSN: 0120-8160 . informó valores de humedad para almacenaje de la papa cruda entre el 75-76% atribuido a los procesos de síntesis microbiana.
En relación con el porcentaje de cenizas en la fermentación de los residuales poscosecha de S. tuberosum con el preparado microbiano se considera que contiene valores más altos que la papa cruda (Cárdenas et al. 2008Cárdenas,
J., Aranda, E., Hernández, D., Lagunes, L., Ramos, J. & Salgado, S.
2008. "Obtainment of a feed fermented in solid state from return
bagasse pith, rice polishing and inocula. Its use in animal feeding". Cuban Journal of Agricultural Science, 42(2):173-176, ISSN: 2079-3480.).
Los valores encontrados en este estudio dependen de la naturaleza del
suelo donde fue cultivado el tubérculo y al 0,5% de premezcla mineral
adicionado al sustrato para la fermentación (Miranda et al. 2018Miranda,
J.E., Marin, A.C., Sánchez, D.M., García, Y.H. 2018. "Obtaining,
characterization and evaluation of two candidate preparations for
probiotics developed with agroindustrial waste". Revista MVZ Córdoba, 23(1): 6487-6499, ISSN: 0122-0268, DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1243.).
La
composición mineral es importante para el metabolismo de la microbiota y
lograr biomasa proteica, es por ello que se observa un incremento de la
PB de 5,5; 5,28 y 4,73 unidades porcentuales a 20, 25 y 30°C, en 24 h
de fermentación, respectivamente. Sin embargo, disminuyó notablemente
después de 48 horas de fermentación en la misma proporción y llegó a
estar por debajo del control para las temperaturas más elevadas. Fonseca y Borrás (2014)Fonseca,
D. & Borrás, L. 2014. "Evaluación del efecto de la papa fresca
incluida en un alimento para vacas Holstein, sobre la producción y
calidad de leche. Revista Ciencia y Agricultura, 11(1): 55-65, ISSN: 2539-0899, DOI: https://doi.org/10.19053/01228420.3488. determinaron un valor de 7,73% de PB en el tubérculo; valor superado en este estudio al fermentar los residuos poscosecha de S. tuberosum
y llega a ser hasta del 21% en el producto fermentado en 24 h a 20°C,
esta condición pudiera atribuirse al preparado microbiano con actividad
ácido láctica como acelerante biológico. Okubo et al. (2018)Okubo,
M., Sato, K., Matsuda, S., Masuko, T. & Souma, K. 2018. "Data on
chemical compositions and fermentation quality of silages made from
low-market value vegetables supplemented with potato protein concentrate
a byproduct of starch production". Data in Brief, 21: 11829-1832, ISSN: 2352-3409, DOI: https://doi.org/10.1016/j.dib.2018.11.043.
añadieron un concentrado proteico de papa cruda y complementaron la
proteína del contenido de los ensilajes sin inóculo y obtuvo resultados
favorables.
El indicador de proteína verdadera incrementó 2,01 y
2,7 unidades porcentuales a temperatura de 20 y 25°C, en 24 h de
fermentación. La relación más alta de (PV/PB*100) para estas
temperaturas fue de 61.2 y 69.42, respectivamente, a las 48 h. de
fermentación. Sin embargo, a mayor temperatura se deprime la síntesis
microbiana en 24 h y se mantiene sin variación a las 48 h de acuerdo al
control, por lo que el aumento en cinco grados Celsius para estas
condiciones de fermentación limitan el crecimiento microbiano y por ende
pudieran afectar la síntesis de proteína.
En el presente trabajo
hubo incremento en la fibra con respecto al tiempo de fermentación
debido probablemente al aumento del contenido de paredes celulares, en
relación al almidón de los residuos de papa y a la fermentación de los
azúcares por los microorganismos que se desarrollaron en el sistema,
resultados similares fueron encontrados por Aranda et al. (2012)Aranda,
E., Georgana, L., Ramos, J. & Salgado, S. 2012. "Elaboration of a
feed based on the solid state fermentation of sugarcane and with
different levels of zeolites". Cuban Journal of Agricultural Science, 46(2): 159-163, ISSN: 2079-3480..
Sin embargo, los valores aún son muy bajos lo que implica la necesidad
de combinar este alimento con otros altos en fibra, a fin de producir un
mejor aprovechamiento específicamente para los rumiantes.
Tabla 2.
Comportamiento de los indicadores químicos de los residuales poscosecha de S. tuberosum con el preparado microbiano.
Indicador (%) | Temperatura (o C) | Tiempo de Fermentación (h) | EE ± Sign |
---|
0 | 24 | 48 |
---|
MS | 20 | 15,83a | 38,13c | 19,30b | 0,30 P<0,0001 |
25 | 39,48c | 19,18b |
30 | 38,59c | 17,98b |
PB | 20 | 15,55ab | 21,05c | 16,68b | 0,420 P<0,0001 |
25 | 20,83c | 14,85a |
30 | 20,28c | 14,84a |
PV | 20 | 8,84ab | 10,85c | 10,31bc | 0,480 P=0,0125 |
25 | 11,54c | 10,31bc |
30 | 7,83a | 8,24a |
FB | 20 | 5,08a | 8,43ab | 9,71b | 1,170 P=0,0038 |
25 | 8,43ab | 9,71b |
30 | 9,04b | 7,24ab |
Cenizas | 20 | 6,39a | 7,89b | 16,17e | 0,42 P<0,0001 |
25 | 8,40b | 11,01c |
30 | 13,94d | 6,63a |
a, b, c, d, eMedias con letras distintas difieren a P<0,05 (Duncan, 1955Duncan, D.B. 1955. "Multiple Range and Multiple F Tests". Biometrics, 11(1): 1-42, ISSN: 0006-341X, DOI: https://doi.org/10.2307/3001478.)
En la tabla 3
se muestran los resultados del análisis microbiológico realizado a la
fermentación de los residuos de la papa inoculada con el preparado
microbiano. Se observa efecto de la temperatura con respecto al tiempo
de fermentación en las concentraciones microbianas de bacterias
mesófilas, levaduras y bacterias ácido lácticas (P<0,0001). No se
detectó presencia de coliformes fecales, Salmonella, ni esporas de Clostridium, resultado que avala su calidad para utilizarlo como producto sanitariamente seguro para la nutrición animal.
Se
observa aumento de concentración de las bacterias mesófilas aerobias,
las que aumentaron con las temperaturas de fermentación. Este resultado
está relacionado con la disminución pH de fermentación y los ácidos
orgánicos producidos en ese tiempo como se mostró en la tabla 1 y probablemente a bacteriocinas producidas por las bacterias lácticas que actúan como sustancias antimicrobianas (Parra 2010Parra R.A. 2010. "Review. Bacterias ácido lácticas: Papel funcional en los alimentos". Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial, 8(1): 93-105, ISSN: 1909-9959. y Nkosi et al. 2019Nkosi,
B.D., Meeske, R., Muya, M.C., Langa, T., Thomas, R.S., Malebana,
I.M.M., Motiang, M.D., Van Niekerk, J.A. 2019. "Microbial additives
affect silage quality and ruminal dry matter degradability of avocado (Persia Americana) pulp silage". South African Journal of Animal Science, 49(6): 997-1007, ISSN: 2221-4062, DOI: https://doi.org/10.4314/sajas.v49i6.3.)
Las
levaduras como parte del ecosistema de fermentación aumentaron
notablemente con el tiempo de fermentación. Se observan diferencias en
su crecimiento con respecto al control y con respecto a las temperaturas
estudiadas (P<0,0001) debido al amplio rango de crecimiento de este
género y a las interacciones microbianas entre las cepas seleccionadas,
que pudieran coexistir en relaciones de estimulación y neutralismo con
las BAL, estudios similares que se llevan a cabo en otros sustratos con
una mayor acidez (Pardo y Ferrer 2019Pardo,
I. & Ferrer, S. 2019. Chapter 7 - Yeast-Bacteria Coinoculation. In:
Red Wine Technology. Morata, A, (ed.). 1st Ed. Ed. Academic Press.
Madrid, Spain, p. 99-114, ISBN: 978-0-12-814399-5, DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814399-5.00007-4.).
Mientras que otras investigaciones con levaduras sugieren que puede ser
posible aplicar una cepa microbiana de alimentación directa al
ensilaje, hacer que sobreviva al ensilaje y multiplicarse durante la
alimentación (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.).
La
concentración de las BAL aumentó gradualmente hasta las 48 h con las
tres temperaturas en estudio. Estos incrementos en biomasa microbiana
son favorables para la producción de ácidos orgánicos que mantienen los
valores de pH bajos y eliminan microorganismos patógenos (Muck et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.), lo que indica que la humedad del ecosistema no influyó en el deterioro de la fermentación final.
Las bacterias ácido lácticas que se emplearon en este estudio son heterofermentativas de mediana y rápida acidificación, L. delbrueckii ssp bulgaricus y S. thermophilus,se escogieron como cultivos iniciadores por ser consideradas sanitariamente seguras y proveen de estabilidad aeróbica (Munk et al. 2018Muck,
R.E., Nadeau, E.M.G., McAllister, T.A., Contreras-Govea, F.E., Santos,
M.C. & Kung, L. 2018. "Silage review: Recent advances and future
uses of silage additives". Journal of Dairy Science, 101(5): 3980-4000, ISSN: 0022-0302, DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2017-13839.).
Están ampliamente distribuidas en la naturaleza y han sido aisladas de
diversos ambientes, para su crecimiento requieren de azúcares como
glucosa y lactosa, además de aminoácidos, vitaminas y otros factores (Azadnia et al. 2011Azadnia, P., Zamani, M., Shah, G., Khalegh, M., Karimi, M. & Taarof, N. 2011. "Isolation and identification of thermophilic Lactobacillic from tradicional yoghurts of tribes of Kaserum". Journal of Animal and Veterinary Advances,10(6): 774-776, ISSN: 1680-5593., Mesa 2016Mesa,
J.R. 2016. Efecto de un biopreparado de producción local a base de
microorganismos eficientes sobre diferentes cultivos en la provincia de
Cienfuegos. Memorias IV Convención Internacional Agrodesarrollo 2016,
Varadero, Matanzas, Cuba. y Miranda et al. 2018Miranda,
J.E., Marin, A.C., Sánchez, D.M., García, Y.H. 2018. "Obtaining,
characterization and evaluation of two candidate preparations for
probiotics developed with agroindustrial waste". Revista MVZ Córdoba, 23(1): 6487-6499, ISSN: 0122-0268, DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.1243.), nutrientes que se encuentran en la mezcla de fermentación.
Tabla 3.
Efecto de la temperatura en la
composición de bacterias mesófilas aerobias, levaduras, bacterias acido
lácticas durante la fermentación de los residuales poscosecha de S. tuberosum con el preparado microbiano.
Microorganism (log 10 UFC/mL) UFC/mL | Fermentation Time (h) | Temperature (°C) | EE± Sign |
---|
20 | 25 | 30 |
---|
Bacterias mesófilas aerobias | 0 | 5,34ª (2,1x105) | 5,33ª (2,1x105) | 5,33ª 2,1x105) | 0.02 P<0,0001 |
24 | 8,10e (1,2x108) | 7,74d (5,5x107 ) | 7,80d (6,3x107) |
48 | 7,03b (1,0x107) | 7,18c (1,5x107) | 8,19f (1,4x108) |
Levaduras | 0 | 4,40c (2,5x104) | 5,33d (2,5x104) | 5,33d (2,5x104) | 0.01 P<0,0001 |
24 | 4,37c (2,1x104) | 4,11b (1,3x104) | 4,04a (1,1x104) |
48 | 5,75f (5,6x105) | 5,74f (5,3x105) | 5,61e (4,1x105) |
Bacterias ácido lácticas | 0 | 5,88a (7,5x105) | 5,88a (7,5x105) | 6,90b (8,0x106) | 0.02 P<0,0001 |
24 | 7,77f (6,1x107) | 7,77f (6,1x107) | 7,70e (5,0x107) |
48 | 6,98c (9,5x106) | 7,09d (1,0x107) | 8,03g (1,0x108) |
a , b, c, d, e, f, gMedias con letras distintas difieren a P<0,05 (Duncan, 1955Duncan, D.B. 1955. "Multiple Range and Multiple F Tests". Biometrics, 11(1): 1-42, ISSN: 0006-341X, DOI: https://doi.org/10.2307/3001478.)
*Data were transformed according to log10 (X) because they do not follow a normal distribution
( ) means of the colony forming units per milliliters (cfu•mL-1)
Las variables o indicadores analizados en el presente trabajo
(concentración microbiana, proteína, amoníaco, AGCC, pH) como resultado
de la fermentación de los residuos poscosecha de la papa determinan un
producto con características para ser considerados en la alimentación
del rumiante. Estos indicadores forman parte del sistema de control de
la calidad con inoculaciones biológicas, sin embargo, los resultados en
la fibra y MS demuestran que deben ser estudiadas otras formulaciones
para su efectivo proceso de obtención del producto final. Los resultados
demuestran que el preparado microbiano con actividad ácido láctica
utilizado actúa como acelerante biológico del proceso de fermentación
sólida de los residuos poscosecha de la papa bajo las condiciones
establecidas de experimentación.
Se concluye que la fermentación en estado sólido de residuos poscosecha de Solanum tuberosum
y un preparado microbiano con actividad láctica favorece este proceso y
deben ser estudiadas otras formulaciones con material secante y fibroso
para un proceso efectivo de ensilado del producto final.